Лекция ВНУТРИБОЛЬНИЧНАЯ ИНФЕКЦИЯ. ПОНЯТИЕ ДЕЗИНФЕКЦИИ. СТЕРИЛИЗАЦИИ. ЭТАПЫ ОБРАБОТКИ МЕДИЦИНСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ.

Презентация:



Advertisements
Похожие презентации
Организация дезинфекционных и стерилизационных мероприятий в организациях, осуществляющих медицинскую деятельность.
Advertisements

ПРОВЕДЕНИЕ РАЗЛИЧНЫХ ПРОБ ДЛЯ КОНТРОЛЯ КАЧЕСТВА ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКИ Выполнили студентки М-22 группы: Олейник Регина и Сидорук Вера.
ИНФЕКЦИОННЫЙ КОНТРОЛЬ ИНФЕКЦИОННАЯ БЕЗОПАСНОСТЬ. Внутрибольничная инфекция (ВБИ)- любое клинически распознаваемое заболевание, которое поражает пациента.
Дезинфекция, виды, методы, требования.. Дезинфекция – это уничтожение патогенных условно – патогенных микроорганизмов и их токсинов в окружающей среде.
«Роль медицинской сестры в организации ЦСО» Выполнил: студент группы М-41 Шарипов Д.С..
Внутрибольничные инфекции. Что такое ВБИ ? Внутрибольничные инфекции (ВБИ) - это инфекционные заболевания, полученные больными в лечебных учреждениях.
Стерилизация Презентация по дисциплине: «Основы Сестринского Дела» Автор: Филатова А.С. Лекция 4.
Дезинфекция, ПСО, стерилизация.
ГАОУ СПО НСО «Куйбышевский медицинский техникум» Куйбышев 2012г.
Внутрибольничная инфекция. Инфекционная безопасность это комплекс правил и мероприятий, направленных на профилактику возникновения инфекционных заболеваний.
Авалиани 2-5 АСЕПТИКА АНТИСЕПТИКА. Перед любыми операционными и перевязочными манипуляциями необходимо проведение мероприятий по устранению и предупреждению.
Выполнила студентка 2 го курса Алилова Саният. Асептика -комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания возбудителей инфекции в рану или.
. Инфекционная безопасность, инфекционный контроль. Обучающая программа.ГАОУ СПО "ООМК" КОЛОМАК В.А
АСЕПТИКА Выполнила : студентка Бух Алмазбек к Айпери.
МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ УЧРЕЖДЕНИЕ ОБРАЗОВАНИЯ «СЛУЦКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ КОЛЛЕДЖ» Подготовила: Матуль Н.В., 1 курс, ЗЛД-181.
Презентация по теме "Профилактика парентеральных инфекций среди медицинского персонала".
ЛЕКЦИЯ РОЛЬ СТЕРИЛИЗАЦИОННЫХ МЕРОПРИЯТИЙ В ПРОФИЛАКТИКЕ ВБИ И.М.АБРАМОВА доцент кафедры дезинфектологии МПФ ППО 1 МГМУ им. И.М.Сеченова.
ЛЕКЦИЯ ПРАВИЛА ОБРАБОТКИ ЭНДОСКОПОВ И ИНСТРУМЕНТОВ К НИМ. ДВУ И СТЕРИЛИЗАЦИЯ ЭНДОСКОПОВ И.М.АБРАМОВА доцент кафедры дезинфектологии МПФ ППО 1 МГМУ им.
Контроль качества стерилизации это регулярные мероприятия по получению, документированию и интерпретации данных, необходимых для доказательства надежности.
Транксрипт:

Лекция ВНУТРИБОЛЬНИЧНАЯ ИНФЕКЦИЯ. ПОНЯТИЕ ДЕЗИНФЕКЦИИ. СТЕРИЛИЗАЦИИ. ЭТАПЫ ОБРАБОТКИ МЕДИЦИНСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ

Санитарно-эпидемиологический режим ЛПУ Любое клинически выраженное заболевание микробного происхождения, которое поражает больного в результате его поступления в больницу или обращения за медицинской помощью вне зависимости от появления симптомов заболевания у пациента во время пребывания в стационаре или после его выписки, а также инфекционное заболевание сотрудника лечебной организации вследствие его инфицирования при работе в данной организации подлежит учету и регистрации как внутрибольничная инфекция. САНИТАРНО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИЕ ТРЕБОВАНИЯ К ОРГАНИЗАЦИЯМ, ОСУЩЕСТВЛЯЮЩИМ МЕДИЦИНСКУЮ ДЕЯТЕЛЬНОСТЬ Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы Сан ПиН – 10 ВНУТРИБОЛЬНИЧНАЯ ИНФЕКЦИЯ

Внутрибольничная инфекция Проблема ВБИ остается одной из острых в современном здравоохранении. ВБИ имеет большую медицинскую значимость социальную значимость Удлинение времени пребывания больных в стационаре Рост летальности Материальные потери ЛПУ Отключение больного от семьи и трудовой деятельности Инвалидизация больного Летальные исходы

Наиболее распространенные ВБИ Инфекции мочевыделительной системы Гнойно-воспалительные инфекции Инфекции дыхательных путей Инфекции кожных покровов

Из «традиционных» инфекционных заболеваний наибольшую опасность внутрибольничного распространения имеют: Дифтерия Коклюш Менингококковая инфекция Эшерихиозы Легионеллез Хеликобактериоз Брюшной тиф Хламидиозы Ротавирусная инфекция Грипп Кандидозы

Для возникновения ВБИ необходимо наличие трех звеньев эпидемиологического процесса: Источника инфекции (возбудителя) Путей и факторов передачи возбудителя Восприимчивого к инфекции организма человека

Основные возбудители ВБИ: Грамположительные палочки Грамотрицательные палочки Условно-патогенные и патогенные грибы Вирусы Стафилококк, стрептококк, энтерококк Энтеробактерии, Синегнойная палочка Плесневые грибы Дрожжеподобные грибы Возбудители микозов Возбудители простого герпеса, ветряной оспы Аденовирусы Вирусы гриппа и парагриппа Энтеровирусы Возбудители вирусных гепатитов

Пути передачи ВБИ: Воздушно-капельный, воздушно- пылевой Контактный, предметно-бытовой, гемоконтактный Пищевой, водный Артифициальный (искусственный) или медицинский (через руки медперсонала, инструменты, перевязочный материал

Наиболее опасные с точки зрения передачи ВБИ следующие мероприятия: 1. Диагности ческие 2. Лечебные Забор крови Зондирование желудка, двенадцатиперстной кишки Эндоскопии Пункции Биопсии Венесекция Мануальные исследования Трансфузии (крови, сыворотки, плазмы) Инъекции Операции Интубация Ингаляционный наркоз ИВЛ Катетеризация сосудов, мочевого пузыря Гемодиализ Ингаляции лечебных аэрозолей Трансплантация тканей и органов

Причиной возникновения ВБИ могут быть: Зараженный инструментарий Медицинская аппаратура Постельные принадлежности Матрацы Кровати Поверхности кранов, раковин Контаминированные растворы антисептиков, антибиотиков, других лекарственных препаратов Предметы ухода за больными Перевязочный и шовный материал Дренажи Кровь и кровезамещающие растворы Спецодежда Волосы и руки больных и медперсонала

Основные источники госпитальных инфекций. Источник Роль источника в распространении Больные Основной источник; роль в распространении при различных нозологических формах и в различных стационарах варьирует Носители Имеет большое значение в распространении стафилококковых инфекций, гепатитов B, C и D, сальмонеллез, шигеллез и др. Медицинские работники Чаще бессимптомные носители преимущественно "госпитальных" штаммов; играют важную роль в распространении возбудителей респираторных инфекций (пневмоцистозов, пневмоний, бронхитов и ОРВИ). Частота носительства могу достигать 50%. Лица, привлекаемые к уходу за больными Большого значения не имеют, могут быть носителями стрептококков, стафилококков, энтеро - и камбилобактерий, возбудителей венерических болезней, ротавирусов, цитомегаловирусов и прочих герпетовирусов, возбудителей гепатитов и дифтерии, пневмоцист. Посетители, навещающие больных Роль очень ограничена, могу быть носителями стафилококков, энтеробактерий либо болеть ОРВИ.

Причины возникновения ВБИ: Недостаточная подготовка медперсонала. Небрежная дезинфекция рук. Несоблюдение правил асептики и антисептики персоналом и пациентами. Отсутствие централизованной дезинфекции и стерилизации материалов и оборудования. Снижение сопротивляемости организма пациентов.

Основа профилактики ВБИ - это Комплекс дезинфекционно- стерилизационных мероприятий, направленных на уничтожение вегетативных и споровых форм микроорганизмов ДЕЗИНФЕКЦИОННЫЕ Дезинфекция (профилактическая и очаговая) Дезинсекция Дератизация СТЕРИЛИЗАЦИОННЫЕ Предстерилизационная очистка Стерилизация

Дезинфекция – совокупность способов полного или частичного уничтожения потенциально патогенных для человека микроорганизмов на объектах внешней среды с целью разрыва пути передачи возбудителей. Дезинсекция – учение о способах и средствах борьбы с членистоногими, которые передают человеку заразные заболевания или причиняют экономический ущерб путем уничтожения или порчи продуктов или обстановки. Дератизация или истребление грызунов, которые наносят большой вред человеку, включает в себя ряд мероприятий, направленных на охрану здоровья населения.

НЕОБХОДИМОЕ ОСНАЩЕНИЕ ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ ДЕЗИНФЕКЦИОННЫХ И СТЕРИЛИЗАЦИОННЫХ МЕРОПРИЯТИЙ Моющие и дезинфицирующие средства различного назначения кожные антисептики Средства для стерилизации изделий медицинского назначения Стерилизационный упаковочный материал Средства контроля Отдельные емкости, используемые для обработки различных объектов: для дезинфекции, предстерилизационной очистки, стерилизации ИМН, а также для их предварительной очистки; для дезинфекции поверхностей в помещениях, мебели, аппаратов, приборов и оборудования; для обеззараживания уборочного инвентаря, отходов класса Б и В.

Емкости с рабочими растворами дезинфицирующих средств должны быть снабжены плотно прилегающими крышками, иметь четкие надписи с указанием:. названия средства, его концентрации, назначения, даты приготовления, предельного срока годности.

Профилактическая дезинфекция осуществляется в формах: плановой; по эпидемиологическим показаниям; по санитарно-гигиеническим показаниям. Очаговая дезинфекция осуществляется в формах: Очаговая текущая Очаговая заключительная Плановая профилактическая дезинфекция проводится систематически в ЛПО при отсутствии в них ВБИ, когда источник возбудителя не выявлен и возбудитель не выделен, с целью: уменьшения микробной обсемененности объектов внутрибольничной среды и предупреждения возможности размножения микроорганизмов; предупреждения распространения микроорганизмов через изделия медицинского назначения, руки и кожные покровы медицинского персонала и больных; освобождения помещений ЛПО и окружающей территории от членистоногих и грызунов.

Профилактическая дезинфекция по эпидемиологическим показаниям проводится с целью не допустить распространения возбудителей ВБИ и их переносчиков в отделениях (палатах) из соседних отделений (палат). Профилактическая дезинфекция по санитарно-гигиеническим показаниям проводится как разовое мероприятие в помещениях организаций, находящихся в неудовлетворительном санитарном состоянии по методике проведения генеральных уборок.

Очаговая дезинфекция проводится при выявлении источника инфекции (больные, носители) в стационарах (отделениях), амбулаторно-поликлинических организациях любого профиля с учетом эпидемиологических особенностей инфекции и механизма передачи ее возбудителя. Целью очаговой дезинфекции является предупреждение распространения возбудителей инфекций от больных (носителей) с их выделениями и через объекты, имевшие контакт с больными в стационаре (отделении) и за его пределами. При очаговой дезинфекции: обеззараживаются различные объекты, имеющие эпидемиологическое значение в передаче возбудителя; проводится гигиеническая обработка рук медицинского персонала, полная или частичная обработка кожных покровов больных и персонала; дезинсекция и дератизация. Очаговая дезинфекция осуществляется в формах текущей и заключительной очаговой дезинфекции.

Текущая очаговая дезинфекция объектов внутрибольничной среды в окружении больного проводится с момента выявления у больного ВБИ и до выписки (или перевода в другое отделение/стационар). Заключительная очаговая дезинфекция проводится после выписки, смерти или перевода больного в другое отделение или стационар с целью обеззараживания объектов внутрибольничной среды, с которыми он контактировал в процессе пребывания в стационаре.

При проведении инвазивных манипуляций во всех отделениях используются стерильные ИМН, которые после использования подвергаются при профилактической и очаговой дезинфекции обеззараживанию, а изделия многократного применения - также предстерилизационной очистке и стерилизации. Предстерилизационная очистка и стерилизация проводятся в централизованных стерилизационных отделениях, а при их отсутствии - в отделениях ЛПО. Предстерилизационная очистка осуществляется в качестве самостоятельного процесса после дезинфекции изделий или при совмещении с ней. Её цель – удаление с изделий медицинского назначения любых неорганических и органических загрязнений (включая белковые, жировые, механические и другие), в том числе остатков лекарственных препаратов, сопровождающееся снижением общей микробной контаминации для облегчения последующей стерилизации этих изделий. Целью стерилизации ИМН - обеспечение гибели на изделиях (и внутри них) микроорганизмов всех видов, в том числе и споровых форм.

Требования к проведению дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации изделий медицинского назначения Медицинские изделия многократного применения подлежат последовательно: дезинфекции, предстерилизационной очистке, стерилизации, последующему хранению в условиях, исключающих вторичную контаминацию микроорганизмами. Изделия однократного применения после использования при манипуляциях у пациентов подлежат обеззараживанию/обезвреживанию, их повторное использование запрещается.

Методы дезинфекции 1. Физический 2. Химический Дезинфекцию Дезинфекцию проводят ручным или механизированным способом.

Физические средства дезинфекции: высушивание, воздействие высокой температурой (сжигание, прокаливание, кипячение), пар, горячий воздух, ультрафиолетовое облучение.

Физические методы дезинфекции ИМН 1. Кипячение в 2% р-ре соды -15 минут, в дистилированной воде (без соды) – 30 минут. 2. Паровой под давлением 05 атм.при 110° – 20 минут в паровых стерилизаторах (в автоклавах) в упаковке. 3. Воздушный при 120 °– 45 минут в воздушных стерилизаторах (сухожаровой шкаф) без упаковки на лотках.

Химическая дезинфекция Проводится путем: 1. Полного погружения изделий в дезинфицирующий раствор в закрытых эмалированных, пластиковых или стеклянных емкостях. 2. Путем 2 х-кратного протирания поверхностей салфеткой, смоченной в дезсредстве и отжатой,с интервалом минут

Дезинфекция медицинского инструментария и шприцев Дезинфицирующее средство Концентрация, %Время выдержки, мин. Примечание старые средства 1 хлорамин 360 полное погружение в дезраствор при туберкулезе перекись водорода 490 новые средства 3 септодор-форте 0,460 полное погружение в дезраствор при туберкулезе 0,490 4 пероксимед 390 при туберкулезе дезоксон 0,560 при туберкулезе 0,560 6 жавелион 0,160 при туберкулезе 0,260 7 кипячение в дистиллированной воде 30 кипячение в растворе соды 215

Объем емкости для проведения обработки и объем раствора средства в ней должны быть достаточными для обеспечения полного погружения изделий медицинского назначения в раствор; толщина слоя раствора над изделиями должна быть не менее одного сантиметра сантиметра.

Поверхностно-активные вещества (в т.ч. ЧАС, амины, амфолиты, третичные амины); Альдегиды (глутаровый, янтарный, формальдегид, ортофталевый альдегид, глиоксаль или щавелевый альдегид); Соединения хлора (хлорамины, ди- и трихлоризоциануровая кислота, гипохлорит натрия), йода, брома; Активного кислорода (перекисные соединения, пероксикислоты или надкислоты, пербораты, озон); Производные гуанидина (хлоргексидина биглюконат, кокоспропилендиамингуанидин ацетат, полигексаметиленгуанидин фосфат или гидрохлорид); Фенольные дериваты (орто-фенилфенол, орто- бензил-пара-хлорфенол, 2-фенилфенол, пара- тертамилфенол); Спирты (этиловый, изопропиловый и др.); Кислоты (уксусная, молочная, салициловая, борная и др.); Щелочи (едкий натрий и едкий калий, каустическая сода, Демп )

Большинство препаратов представляет собой комбинации нескольких действующих веществ (например, ЧАС+альдегиды, ПАВ+перекись водорода). Воздействие различных ДВ в комплексе значительно усиливает антимикробную активность препарата. Правильно подобранные комбинации действующих веществ должны обеспечивать максимальную эффективность обеззараживания и минимальную токсичность препарата.

Комплексный подход к выбору дезинфектантов можно свести к учету 3 составляющих: Спектра антимикробной активности препарата (и соответственно его состава); Экологического фактора (какой вред персоналу, пациентам, окружающей среде может причинить применение препарата); Экономического фактора (какой экономический эффект дает применение препарата).

АЛГОРИТМЫ ПРИГОТОВЛЕНИЯ ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИХ РАСТВОРОВ ПРИГОТОВЛЕНИЕ МАТОЧНОГО РАСТВОРА ХЛОРНОЙ ИЗВЕСТИ I. ПОДГОТОВКА К МАНИПУЛЯЦИИ: 1. Наденьте дополнительный халат, косынку, респиратор, перчатки, очки 2. Приготовьте I кг сухой хлорной извести (в стандартной упаковке с указанием названия, даты приготовления, срока годности), 9 л холодной воды, емкость для разведения (кастрюлю или ведро емкостью 10 л). II. ВЫПОЛНЕНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ. 1. Налить в емкость небольшое количество воды (предупреждение распыления порошка из хлорной извести) Высыпьте 1 кг сухой хлорной извести в кастрюлю и размельчите деревянной лопаточкой до образования однородной кашицеобразной массы 4. Долейте остальную воду 5. Закройте кастрюлю крышкой 6. Отстаивайте смесь в течение суток

III. ОКОНЧАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ. 1. Снимите дополнительный халат, перчатки, респиратор, косынку. 2. Вымойте руки 3. На этикетке напишите дату приготовления, концентрацию, подпись. Для получения 10 % осветленного раствора хлорной извести 1. Слейте полученный раствор в темную маркированную бутыль 2. Закройте пробкой 3. На этикетке напишите дату и подпись приготовившего раствор. 4. Храните 10 % осветленный раствор хлорной извести до 10 суток Для приготовления рабочих растворов хлорной извести Используйте мерную емкость. Работайте по таблице 0,5 %500 мл 10 % раствора хлорной извести на 9,5 л воды 1 %1 л 10 % хлорной извести на 9 л воды.

ПРИГОТОВЛЕНИЕ РАСТВОРОВ ХЛОРАМИНА I. ПОДГОТОВКА К МАНИПУЛЯЦИИ: 1. Оденьте перчатки 2. Приготовьте мерные емкости, хлорамин II. ВЫПОЛНЕНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ. 1. Наберите в мерную емкость для хлорамина нужное количество порошка. Встряхните, чтобы образовалась ровная поверхность 2. Налейте небольшое количество воды. Высыпьте порошок 3. Размешайте порошок до кашицеобразного состояния 4. Долейте воды до отметки 1 литр, размешайте III. ОКОНЧАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ. 1. Снимите перчатки 2. На этикетке напишите дату приготовления концентрацию, подпись

ПРИМЕЧАНИЕ: Инструментарий перед дезинфекцией отмыть в отдельной емкости с водой с последующим обеззараживанием воды: 1. Кипячение 30 минут 2. Добавить 30 г хлорамина на 970 мл воды, отстоять 60 минут.

проводят ручным или механизированным способом

I. ПОДГОТОВКА К МАНИПУЛЯЦИИ 1. Приготовить один из моющих растворов («Лотос», «Айна», «Астра», «Биолот», «Прогресс») с помощью мерных емкостей: а) 17 мл 27,5% перекиси водорода, 5 г СМС и 978 мл воды. б) 170 мл 3% перекиси водорода, 5 г СМС и 825 мл воды. II. ВЫПОЛНЕНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ. 1. Промойте инструментарий от дезинфицирующего раствора под проточной водой 2. Замочите в предварительно подогретом моющем растворе при температуре 50° -55° С на 15 минут. 3. С помощью ершей, салфеток, мандренов в моющем растворе тщательно отмойте инструментарий 4. Под проточной водой промойте инструментарий, при использовании порошка "Лотос" - 10 мин, "Прогресс" - 5 мин 5. Проведите пробу на скрытую кровь и наличие моющего раствора 6. Прополощите в дистиллированной воде от солей и щелочной проточной воды (1 мин каждое изделие) 7. Положите на сетку и просушите в сухожаровом шкафу при температуре 85 С до полного исчезновения влаги. III. ОКОНЧАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ. I.Упакуйте инструментарий в крафт-пакеты, биксы или II.бязевую упаковку для стерилизации II ЭТАП. ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННАЯ ОЧИСТКА.

АЛГОРИТМ ПОСТАНОВКИ ПРОБ НА СКРЫТУЮ КРОВЬ И НА МОЮЩЕЕ СРЕДСТВО. I. ПОДГОТОВКА К МАНИПУЛЯЦИИ: 1. Приготовьте один из реактивов: азопирам, амидопирин. бензидин, ортотолуидин фенолфталеин 2. Приготовьте пипетку, салфетку, лоток 3. Возьмите 1% инструментов от общего количества для проведения проб II. ВЫПОЛНЕНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ: 1. Наберите реактив в пипетку, капните на изделие или с помощью шприца 2. При наличии скрытой крови или моющего средства цвет реактива изменится 3. Окрашивание, наступившее позже, чем через минуту, не учитывайте. III. ОКОНЧАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ: 1. Уберите оснащение для проведения проб 2. Продолжайте предстерилизационную очистку проверенного инструментария и шприцев.

Пробы на скрытую кровь и остатки моющего средства. Положительные пробы на скрытую кровь: азопирам(универсальная) – фиолетовое переходит в розово- сиреневое амидопирин- сине-зеленое бензидин - ярко-зеленое ортотолуидин- сине-зеленое Проба на остатки моющего средства фенолфталеином – розовое окрашивание Отменены

При положительной азопирамовой пробе в присутствии следов крови немедленно или не позднее, чем через 1 минуту, появится вначале фиолетовое окрашивание, затем быстро в течение нескольких секунд переходящее в розово- сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Исходный раствор азопирама (приготовленный в аптечном учреждении), следует хранить в плотно закрытом флаконе. Допустимый срок хранения исходного раствора азопирама составляет 2 месяца при температуре 4°С (в холодильнике); при комнатной температуре (20°± 2°С) – не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора в процессе хранения без выпадения осадка не снижает рабочих свойств раствора. ПРИГОТОВЛЕНИЕ РАБОЧЕГО РАСТВОРА АЗОПИРАМА: АЗОПИРАМ + 3% ПЕРЕКИСЬ ВОДОРОДА СООТНОШЕНИЕ 1:1

В случае необходимости пригодность реактива азопирам проверяют следующим образом: 2- 3 капли реактива наносят на пятно крови. Если не позже чем через 1 мин. появится фиолетовое окрашивание, переходящее в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению; если окрашивание в течение 1 минуты не появится, реактивом пользовать не следует.

Азопирам, кроме гемоглобина, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения, окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем), а также ржавчины и кислот. При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и указанных бурое окислителей наблюдается бурое окрашивание реактива, в остальных случаях происходит окрашивание в розово-сиреневый цвет. При постановке азопирамовой пробы окрашивание реактива, наступившее позже, чем через 1 минуту после постанови пробы, не учитывается.При постановке азопирамовой пробы окрашивание реактива, наступившее позже, чем через 1 минуту после постанови пробы, не учитывается.

подвергают повторной очистке до получения отрицательных результатов.В случае положительной пробы на кровь или на остаточные количества щелочных компонентов моющих средств, всю группу контролируемых изделий, от которой отбирали контроль, подвергают повторной очистке до получения отрицательных результатов. Результаты контроля отражают в журнале по форме 366/у.Результаты контроля отражают в журнале по форме 366/у.

Журнал учета качества предстерилизационной обработки Дата Способ обработк и Применяемо е средство Результаты выборочного химического контроля обработанных изделий Фамилия лица проводившег о контроль Наименова­ ние изделий Количеств о штук Из них загрязненных кровью Моющими средствам и Начат «»20__г. Окончен «»20___г.

Стерилизация Стерилизации подвергаются все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, кровью, инъекционными препаратами, а также инструменты, которые соприкасались со слизистыми оболочками.

Стерилизация должна обеспечить гибель всех видов микроорганизмов, находящихся на всех стадиях развития (включая споровые формы), на изделиях медицинского назначения, соприкасающихся с раневой поверхностью или с инъекционными растворами.

Методы стерилизации Физический –Паровой –Воздушный –инфракрасный Химический –Применение химических средств –Газовый –Плазменный

Паровой метод стерилизации проводится в автоклавах по двум режимам: 1.Режим: 2.Режим: При температуре 132 ° Под давлением 2,0 атм в течение 20 минут. Для изделий из коррозионно стойкого материала, стекла, изделий из текстиля При 120 ° под давлением 1,1 атм в течение 45 минут. Для изделий из резины, полимерных материалов. При этих видах стерилизацию проводят в стерилизационных коробках или двойной мягкой упаковке из бязи, пергамента.

Сроки хранения стерильных изделий: Простерилизованные в стерилизационных коробках с фильтром – 20 суток. В остальной упаковке – 3 суток

Стерилизация воздушным методом проводится в сухожаровом шкафу по двум режимам: 1. При 180 ° в течение 60 минут. 2. При 160 ° в течение 150 минут. Оба режима применяются для изделий из металла, стекла, силиконовой резины. Стерилизации подвергаются сухие изделия в упаковке из бумаги мешочной непропитанной или в открытых емкостях.

Срок хранения стерильных изделий: Изделия в упаковке хранятся 3 суток. Изделия без упаковки используются непосредственно после стерилизации.

Стерилизация химическим методом: Проводится при полном погружении изделий в дезраствор в закрытых емкостях из стекла или пластмассы или эмалированной посуде. После стерилизационной выдержки изделия ополаскиваются дистилированной водой.

Стерилизация химическим методом перекисью водорода проводится по двум режимам: При 18 ° в течение 360 минут. При 50 ° в течение 180 минут. температура в процессе стерилизации не поддерживается, раствор перекиси водорода используется в течение 7 суток со дня приготовления при его хранении в закрытой емкости в темном месте.

В изуально оценивают плотность закрытия крышки стерилизационной коробки или целостность стерилизационной упаковки однократного применения; проверяют цвет индикаторных меток химических индикаторов, в том числе на стерилизационных упаковочных материалах; проверяют дату стерилизации; на бирке бикса, упаковочном пакете ставят дату, время вскрытия и подпись вскрывавшего.

средств окись этилена, формальдегид, озон.Стерилизуют изделия из различных, в том числе термолабильных материалов, используя в качестве стерилизующих средств окись этилена, формальдегид, озон. Перед стерилизацией газовым методом с изделий после предстерилизационной очистки удаляют видимую влагу.

Все изделия, простерилизованные в неупакованном виде, целесообразно сразу использовать по назначению. не более 6 часов.При необходимости, инструменты, простерилизованные в неупакованном виде одним из термических методов, после окончания стерилизации допускается хранить в бактерицидных камерах, а в случае отсутствия таких камер на стерильном столе не более 6 часов.

При воздушном и инфракрасном методах допускается стерилизация инструментов в неупакованном виде (в открытых лотках), после чего их сразу используют по назначению

6 часов после их вскрытия.Изделия медицинского назначения, простерилизованные в стерилизационных коробках, допускается использовать в течение не более чем 6 часов после их вскрытия.

Для снижения риска вторичного обсеменения микроорганизмами камеры, оснащенные ультрафиолетовыми лампами (ультралайт). медицинских металлических инструментов, простерилизованных в неупакованном виде, при их временном хранении до применения используют специальные камеры, оснащенные ультрафиолетовыми лампами (ультралайт). В ряде случаев указанные камеры допускается использовать вместо "стерильных столов". Категорически запрещается использовать камеры с ультрафиолетовыми лампами для дезинфекции и стерилизации изделий.

При стерилизации изделий в неупакованном виде воздушным методом не допускается хранение простерилизованных изделий в воздушном стерилизаторе и их использование на следующий день после стерилизации.

Для паровой стерилизации в качестве упаковочного материала разрешены к использованию: 20 сутокбиксы с фильтром, бумага мешочная непропитанная, бумага мешочная влагопрочная, бумага мешочная высокопрочная, бумага крепированная, пергамент-срок сохранения стерильности в такой упаковке - 20 суток трое суток.и биксы без фильтра, двойная бязевая упаковка со сроком сохранения стерильности трое суток.

1. Упаковка должна быть достаточно прочной, сопротивляться надрывам, проколам и повреждениям. 2. Упаковка не должна разворачиваться или менять форму во время стерилизации 3. Пакеты должны сохранять герметичность. 4. Биксы должны быть с плотно прилегающими крышками, петли и запорные замки без поломок. 5. При использовании биксов с фильтром обратить внимание на их своевременную смену. 6. Запрещается использование скобок, скрепок и других предметов, которые могут быть причиной повреждения упаковки и вывода из строя оборудования.

Перед стерилизацией воздушным методом изделия после предстерилизационной очистки обязательно высушивают в сушильном шкафу при температуре 85°С до исчезновения видимой влаги. Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемым изделиям.

Изделия стерилизуют завернутыми в стерилизационные упаковочные материалы или стерилизуют без упаковки, в этом случае инструменты сразу помещают на «стерильный стол» и используют в течение одной рабочей смены.

Предназначены для оперативного визуального контроля соблюдения критических параметров паровой стерилизации: температуры стерилизации времени стерилизационной выдержки наличия насыщенного водяного пара, внутри стерилизуемых изделий и стерилизационных упаковок с изделиями

Учет, интерпретацию и документирование результатов контроля проводит медицинский персонал, вскрывающий упаковку с простерилизованным изделием (изделиями) при подготовке их к использованию по назначению. При этом использованные индикаторы могут подклеиваться в журнал учета стерилизации (форма 257/у) в выделенные для этого колонки и храниться в качестве документа архива в течение 12 месяцев после использования.

Перед закладкой бикс протирается раствором антисептика. послойная и секционная.Существуют два вида закладки материала в бикс: послойная и секционная. Послойно закладывают однородный материал (например, только халаты или только простыни).Послойно закладывают однородный материал (например, только халаты или только простыни). Разнородный материал закладывают Разнородный материал закладывают по с е к ц и я м (секторам): в каждую секцию помещают один определенный вид материала (например, перчатки, шарики из марли, салфетки, ватные кисточки и т. д.).по с е к ц и я м (секторам): в каждую секцию помещают один определенный вид материала (например, перчатки, шарики из марли, салфетки, ватные кисточки и т. д.). Это позволяет при извлечении материала из бикса не касаться остающегося в нем другого вида материала.

Виды уборок помещений Текущая уборка Генеральная уборка

Текущая уборка проводится медицинскими сестрами 2 раза в день: перед началом работы(предварительная) и после окончания рабочей смены (заключительная).Текущая уборка проводится медицинскими сестрами 2 раза в день: перед началом работы(предварительная) и после окончания рабочей смены (заключительная).

Текущая уборка включает: протирание дезинфицирующим раствором с моющими свойствами стен на высоту вытянутой руки, поверхностей оборудования и полов (экспозиция 3060 минут), после чего следует смывание чистой водой; ультрафиолетовое облучение воздуха и поверхностей в течение 30 минут.

Генеральная уборка операционного блока, перевязочных, родильных залов, процедурных, манипуляционных, стерилизационных и других помещений с асептическим режимом проводится в соответствии с графиком,составляемым старшей медицинской сестрой и утверждаемым заведующим отделением на год, не реже 1 раза в 7 дней, о чем делается отметка в журнале проведения генеральных уборок. Генеральная уборка помещений палатных отделений и других функциональных помещений и кабинетов проводится по графику не реже 1 раза в месяц, с обработкой стен, полов, оборудования, инвентаря, светильников.

Месяцдата январь февраль март апрель май июнь июль август сентябрь октябрь ноябрь декабрь « Утверждаю » Заведующий отделения Гнойной хирургии ________________ Смирнов А.А. График генеральных уборок на 2010 год Перевязочный кабинет (процедурный, операционная и т.д.) « Согласовано » Старшая медсестра отделения Гнойной хирургии ________________ Кононенко Н.В.

Для проведения генеральных уборок необходимо иметь: Специальную одежду и средства индивидуальной защиты (халат, шапочка, резиновые перчатки, резиновый фартук и др.) Промаркированный уборочный инвентарь, Чистые тканевые салфетки

Технология проведения генеральной уборки, включает следующие этапы и требования: надеть чистый халат, шапочку, резиновые перчатки; помещение максимально освободить от мебели или отодвинуть ее к центру помещения для обеспечения свободного доступа к обрабатываемым поверхностям и объектам; окна мыть теплой водой с добавлением 1 столовой ложки нашатырного спирта на 1 литр воды или разрешенного специального моющего средства для окон;

Технология проведения генеральной уборки Дезраствор наносят на стены путем орошения или их протирания на высоту не менее двух метров (в операционных блоках – на всю высоту стен), окна, подоконники, двери, мебель и оборудование. По окончании времени обеззараживания (персонал должен провести смену спецодежды) все поверхности отмывают чистыми тканевыми салфетками, смоченными вдопроводной (питьевой) водой, а затем проводят обеззараживание воздуха в помещении. далее

Использованный уборочный инвентарь обеззараживают в растворе дезинфицирующего средства, затем прополаскивают в воде и сушат. Уборочный инвентарь для пола и стен должен быть раздельным, иметь четкую маркировку, применяться раздельно для кабинетов, коридоров, санузлов. Хранение уборочного инвентаря необходимо осуществлять в специально выделенном помещении или шкафу вне помещений рабочих кабинетов.

В настоящее время в ЛПУ России для дезинфекции широко используется несколько десятков наименований дезинфицирующих средств на основе различных биоцидных веществ, способных убивать микроорганизмы. Все используемые препараты небезопасны для человека.

Уровни дезинфекционных мероприятий 1.Стерилизация. 2. Дезинфекция высокого уровня. 3. Дезинфекция промежуточного уровня. 4. Дезинфекция низкого уровня.

Все дезинфекционные мероприятия в ЛПУ разделены на 4 уровня: Стерилизация - полное устранение или уничтожение всех форм живых организмов. Высокий уровень дезинфекции - уничтожаются все микроорганизмы, за исключением некоторого количества бактериальных спор.

Промежуточный уровень дезинфекции - инактивируются бактерии туберкулеза, вегетативные бактерии, большинство вирусов и грибов, не инактивируются споры. Низкий уровень дезинфекции - уничтожается большинство бактерий, некоторые вирусы и грибы, не инактивируются бактерии туберкулеза и бактериальные споры.

Классификация больничных инструментов с учетом уровня дезинфекции Классификация больничных инструментов Примеры больничных инструментов Классификация процессов по Сполдннгу критичные – проникают в стерильные ткани или сосудистое русло имплантатнты, скальпели, иглы, другие хирургические инструменты стерилизация полукритичные – соприкасаются со слизистыми оболочками (за исключением стоматологических инструментов) эндоскопыдезинфекция высокого уровня термометры, ванны для гидротерапии дезинфекция высокого уровня Некритичные- контактируют только с неповрежденной кожей или находятся лишь в окружении человека стетоскопы, настольные приборы, подкладные судна дезинфекция низкого уровня 1968 г. американский ученый Сполдинг