Золотавин П. Н. к.ф.-м.н. Петрухин А. Н. Использование двухфотонной флуоресцентной микроскопии для исследования липофусциновых гранул и детектирования.

Презентация:



Advertisements
Похожие презентации
Исследование Ретинальных Липофусциновых Гранул Методами Атомно-силовой И Ближнепольной Скарирующей Микроскопии А. А. Астафьев Московский-Физико Технический.
Advertisements

1 Современное состояние и перспективы оптической микроскопии ближнего поля А.Н. Петрухин Институт химической физики им. Н.Н. Семенова Российской академии.
Муниципальное общеобразовательное учреждение «Волхонщинская средняя общеобразовательная школа» Лабораторная работа «Строение клетки» Учитель биологии и.
назад История открытия История открытия клетки клетки Микроскопические методы исследования методы исследования.
Клетка Митохондрия 2. Цитоплазма 3. Центриоли 4. ЭПС 5. Ядро 6. Лизосома 7. Мембрана.
Методы сканирующей зондовой микроскопии Мунавиров Б.В., Физический факультет, КГУ.
Разработка лазерных методов ИК спектрометрии для анализа примесей в полупроводниковых материалах Выпускница: Чернышова Елена Игоревна Руководитель работы:
Современная зондовая микроскопия. Теоретические основы Обобщенная структурная схема сканирующего зондового микроскопа.
Микроскопия Мир за гранью наших ощущений. Первые микроскописты Первый прибор типа микроскопа был построен около 1590 г. Нидерландскими мастерами братьями.
Растровая электронная микроскопия и элементный анализ Батурин А.С. 26 октября 2005 года.
Главные части и органоиды клеток. Главные части клетки: Оболочка Цитоплазма Ядро.
План доклада Определение используемых терминов Теоретический расчёт интенсивности поля лазерного излучения Схема проведения эксперимента Объяснение полученных.
Российский научный центр «Курчатовский институт» Приборы для детектирования и измерения характеристик наночастиц содержащихся в воздухе, воде, биологической.
Современная зондовая микроскопия. Теоретические основы Обобщенная структурная схема сканирующего зондового микроскопа.
ВЕЗИКУЛЯРНАЯ СИСТЕМА КЛЕТКИ.. КОМПОНЕНТЫ ВЕЗИКУЛЯРНОЙ СИСТЕМЫ КЛЕТКИ 1. Гранулярная эндоплазматическая сеть. 2. Агранулярная эндоплазматическая сеть.
Рис. 1 Поперечный разрез двух элементов детектора Рис. 2 Топология кристалла линейки лавинных диодов Разработана конструкция и топология монолитных линейчатых.
Бионаноскопия Снимок колонии вирусов табачьей мозаики на графитовой подложке. Выполнен посредством сканирования атомно- силовым микроскопом в программе.
ИЗО Изображение пятном, в объёме, линией. 1 класс.
РГУ им. Иммануила Канта Инновационный парк Центр ионно-плазменных и нанотехнологий Сканирующий зондовый микроскоп NanoEducator (СЗМ) Контактная литография.
СРАВНИТЕЛЬНЫЙ МОРФОЛОГИЧЕСКИЙ И МОРФОМЕТРИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ПЛЮРИПОТЕНТНЫХ КЛЕТОК, ФИБРОБЛАСТОВ РАЗЛИЧНОЙ ПЛОИДНОСТИ И СТАБИЛЬНЫХ ГИБРИДОВ, ПОЛУЧЕННЫХ ИХ СЛИЯНИЕМ.
Транксрипт:

Золотавин П. Н. к.ф.-м.н. Петрухин А. Н. Использование двухфотонной флуоресцентной микроскопии для исследования липофусциновых гранул и детектирования клеточных органелл in situ

Цели работы Реализация методики двухфотонной микроскопии с одновременным измерением различных параметров флуоресценции. Исследование липофусциновых гранул. Исследование параметров флуоресценции ДМХ in situ в клетках HeLa. Проверка возможности детектирования клеточных органелл по изменению параметров флуоресценции ДМХ.

Двухфотонная флуоресцентная микроскопия Лучи 4 и 5 попадают в детектор. Полезный сигнал увеличивается Преимущества: Высокая контрастность Объемное сканирование

Схема экспериментальной установки

Экспериментально достигнутое разрешение Объектив: Olympus 100x NA=1,25 8х8 мкм Флуоресцентный микроскоп Горизонтальное и вертикальное сечения шарика Обычный оптический микроскоп Достигнутое разрешение Теоретиче ское Экспери мент. Вертикальное 0,7 мкм 1,3 мкм Горизонтальное 300 нм 400 нм

Изображения липофусциновых гранул А2Е Изо-А2Е Отдельная гранула, изображение получено с помощью АСМ, 4х4 мкм. Скопление гранул, двухфотонная микроскопия, 32х32 мкм.

Сканирование клетки HeLa in situ с помощью флуоресцентного зонда ДМХ (спектр флуоресценции) Z = 0 мкмZ = 4 мкмZ = 8 мкм Изображение культуры клеток HeLa, оптический микроскоп. 4-Диметиламинохалкон (ДМХ) Распределение интенсивности флуоресценции ДМХ в клетке HeLa на разной высоте.

Сканирование клетки HeLa in situ с помощью флуоресцентного зонда ДМХ (время затухания флуоресценции) Z = 0 мкмZ = 2 мкм Z = 0 мкм Распределения времени затухания флуоресценции в клетке (от 0,2 до 2,1 нс) Соответствующие распределения интенсивности флуоресценции

Изменение параметров флуоресценции ДМХ в ядерной мембране Клетка на поперечном срезе: 1- плазматическая мембрана, 2 - цитоплазма, 3 - митохондрия, 4 - ядро, АА – линия, вдоль которой сканируются параметры флуоресценции. Интенсивность флуоресценции F(x) вдоль линии АА (отн. ед.). Положение центра массы спектра флуоресценции (нм). Ширина спектра флуоресценции (нм). Время затухания флуоресценции (нс).

Выводы В работе реализована методика двухфотонной микроскопии. Проследили изменение параметров флуоресценции зонда ДМХ в клетках HeLa. Показано, что по изменениям параметров флуоресценции ДМХ можно различать клеточные органеллы in situ.

Благодарим С.К. Гуларяна, В.Ю. Светличного, А.А. Астафьева за сотрудничество и ценные замечания